萝卜(Raphanussativus L.), 产地青岛胶州, 选取其饱满度和整齐度都较高的种子。

大蒜浸提液。取100 g大蒜鲜鳞茎榨汁, 加入1 000 mL H₂O, 过滤, 作为原液, 然后稀释成0、2、4、6、8、10和12%等7个浓度梯度。

在9 cm培养皿中铺4层滤纸, 每个培养皿中播种50粒种子, 重复3次。每天分别用上述不同浓度的大蒜浸提液浇灌, 保持培养皿内湿润。

播种3 d后测定种子发芽势, 5 d后测定种子发芽率, 从6 d起开始测量萝卜幼苗的株高, 每3 d测量1次, 共测量4次。16 d后开始测量萝卜幼苗细胞可溶性糖、蛋白质、叶绿素等的含量。

萝卜种子发芽势、发芽率的计算。

幼苗株高。从第6天起, 每隔3 d, 每处理测量20株萝卜幼苗株高, 共测4次, 求平均值。

可溶性糖含量的测定^[7]。取经过不同浓度大蒜浸提液处理的萝卜幼苗1 g, 置于50 mL锥形瓶中, 加入25 mL蒸馏水, 在水浴锅中沸水浴10 min, 冷却后过滤, 滤液定容至100 mL。取1 mL溶液与5 mL蒽酮溶液于试管中, 摇匀后沸水浴10 min, 冷却后于波长625 nm测定透光度, 进而求得幼苗中可溶性糖含量。

蛋白质总含量的测定。取萝卜幼苗1 g于研钵中快速研磨, 加入4 mL蛋白质抽提溶液, 4 000 r· min^-1离心20 min, 取上清液1 mL与4 mL双缩脲试剂混合, 25 ℃水浴30 min, 冷却后于波长550 nm测定吸光度, 计算幼苗中蛋白质总含量。

叶绿素含量测定。取萝卜幼苗1 g, 加入少量石英砂和10 mL丙酮, 研磨, 液体过滤, 滤液在波长分别为663和645 nm测定透光度, 计算幼苗中叶绿素a、b和总含量。

由图1看出, 经不同浓度的大蒜浸提液处理后, 种子发芽势与发芽率在大蒜浸提液浓度为4%~8%时, 相比对照组都有所增加; 但在大蒜浸提液超过10%时, 萝卜种子的发芽势和发芽率均有不同程度下降。

图1

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	图1 不同浓度的大蒜浸提液处理萝卜种子后发芽势和发芽率

萝卜幼苗经不同浓度的大蒜浸提液浇灌后, 对幼苗生长有一定影响(图2)。当大蒜浸提液浓度为6%时, 萝卜幼苗生长最快, 平均株高均高于对照组, 表现出大蒜浸提液在较低浓度时有刺激作用; 当大蒜浸提液浓度为8%时, 萝卜幼苗的平均株高有所下降, 但与对照组相比不明显。可见大蒜浸提液浓度达到一定高度时可抑制植物的生长。

图2

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	图2 不同浓度大蒜浸提液对萝卜幼苗株高的影响

2.3.1 可溶性糖

与大蒜浸提液影响萝卜幼苗的株高趋势基本相同, 当大蒜浸提液浓度不超过6%时, 萝卜幼苗中可溶性糖含量均高于对照组; 浸提液浓度高于8%时, 可溶性糖含量相比对照组明显减少(图3)。

图3

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	图3 不同浓度大蒜浸提液溶液处理萝卜幼苗后可溶性糖的含量变化

2.3.2 蛋白质

图4显示, 低浓度大蒜浸提液可刺激萝卜幼苗内蛋白质含量快速增加; 当浸提液浓度超过8%时, 细胞内蛋白质含量下降, 但也未低于对照组。可溶性蛋白质能以小分子状态溶于水, 其含量的增加是在不同环境下植物进行渗透调节的一种重要手段, 用以维持细胞内正常渗透势^[8]。大蒜浸提液浓度在小于6%时, 可刺激幼苗的生长, 从而使细胞内蛋白质含量相对增加以维持细胞的正常生长; 而当大蒜浸提液浓度超过8%时, 蛋白质合成酶活性下降, 导致蛋白质含量降低。

图4

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	图4 不同浓度大蒜浸提液溶液处理萝卜幼苗后蛋白质的含量变化

2.3.3 叶绿素

从图5中可看出, 处理组的叶绿素含量(a、b和总量)均高于对照组, 但仍与上述结果类似。在大蒜浸提液浓度较低(< 8%)时, 可刺激叶绿素尽快合成, 以进行光合作用; 而当大蒜浸提液浓度超过10%时, 反而抑制叶绿素的合成。这与可溶性糖含量、蛋白质含量的变化结果相似。

图5

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	图5 不同浓度大蒜浸提液溶液处理萝卜幼苗后叶绿素的含量变化