超高效液相色谱-串联质谱法测定猪肝中3种β-受体激动剂残留
沈东强, 刘标
湖州市农产品质量管理站,浙江 湖州 313000

作者简介:沈东强(1991—),男,浙江湖州人,助理工程师,本科,从事农产品质量安全检测工作,E-mail:1207900102@qq.com

摘要

建立猪肝中3种β-受体激动剂克伦特罗、莱克多巴胺、沙丁胺醇的超高效液相色谱-串联质谱检测方法。3种β-受体激动剂在0.1~10.0 μg·L-1呈现良好线性关系,相关系数大于0.998,检出限为0.002 8~0.011 0 μg·kg-1,定量限为0.009 3~0.038 0 μg·kg-1,加标回收率在86.9%~116.8%,相对标准偏差在0.67%~3.41%,分析在7 min内完成。建立的方法操作简单,灵敏度高,重复性好,可用于肉类样品中β-受体激动剂残留的测定。

关键词: 超高效液相色谱-串联质谱; 猪肝; β-受体激动剂;
中图分类号:O657.63;TS251.7 文献标志码:A 文章编号:0528-9017(2019)02-0271-03

β -受体激动剂是一类人工合成的苯乙醇胺类物质, 又称“ 瘦肉精” , 能够促进瘦肉生长、抑制动物脂肪生长[1, 2, 3]。β -受体激动剂在动物性食品中的残留时间较长, 会严重影响人类健康。因此, 我国农业部第196号和235号公告均禁止β -受体激动剂类药物作为饲料添加剂用于畜牧业。

目前, 有关报道的动物源性食品中β -受体激动剂残留检测的方法主要有酶联免疫法(ELISA)[4, 5, 6]、气相色谱-质谱联用法(GC-MS)[7, 8, 9]和液相色谱-串联质谱联用法(HPLC-MS/MS)[10, 11, 12, 13]。ELISA法无法精准定量, GC-MS法需要衍生, 步骤繁琐, 且不适用于多种目标物的同时测定, HPLC-MS/MS法无需衍生、检出限低、灵敏度高, 但前处理过程比较复杂。本文在现有的基础上, 优化了前处理步骤, 采用岛津超高效液相色谱仪(LC-30A)和三重四级杆串联质谱仪(LCMS-8050)联用技术测定β -受体激动剂药物残留, 分析准确, 效率高, 为当前β -受体激动剂检测领域提供了技术支持。

1 材料与方法
1.1 仪器与试剂

LC-30A超高效液相色谱仪、LCMS-8050三重四级杆串联质谱仪, 日本岛津公司; N-EVAP氮吹仪, 美国Organomation公司; T25匀浆仪, 德国IKA公司; SKY-110WX水浴摇床, 广州沪瑞明仪器有限公司; MS1涡漩式混合器, 上海珂淮仪器有限公司。

甲醇(色谱纯), 甲酸(色谱纯), 水(超纯水), Oasis MCX阳离子交换柱(60 mg· (3 mL-1))。克伦特罗、莱克多巴胺、沙丁胺醇、克伦特罗-D9、沙丁胺醇-D3均购自德国Dr.Ehrenstorfer公司, 纯度≥ 99%, 莱克多巴胺-D3购自加拿大CDN isotopes公司, 纯度≥ 98%。

1.2 方法

1.2.1 标准溶液配制

标准物质分别为克伦特罗、莱克多巴胺、沙丁胺醇。用甲醇配制成1 μ g· mL-1混合标准储备溶液, -18 ℃避光保存。临用时, 用0.1%甲酸水溶液将1 μ g· mL-1混合标准储备溶液依次稀释成0.1、0.2、0.5、1.0、2.0、5.0和10.0 μ g· L-1浓度的混合标准工作液。

同位素内标物分别为克伦特罗-D9、莱克多巴胺-D3、沙丁胺醇-D3。用甲醇配制成100 μ g· mL-1的混合内标储备液, -18 ℃避光保存。临用时, 用0.1%甲酸水溶液将100 μ g· mL-1混合内标储备液进行适当稀释。

1.2.2 样品前处理

准确称取2.0 g(精确至0.01 g)经捣碎的猪肝样品于50 mL离心管中, 加入250 μ L 100 ng· mL-1内标液和8 mL 0.2 mol· L-1 pH值5.2乙酸铵溶液, 充分混匀, 再加入50 μ L β -葡萄糖醛苷酶/芳基硫酸酯酶溶液, 振荡混匀后, 37 ℃水浴水解16 h后取出冷却, 10 000 r· min-1离心5 min, 取出上清液, 下层溶液中加入8 mL 0.1 mol· L-1高氯酸溶液, 振荡提取2 min, 10 000 r· min-1离心5 min, 合并2次上清液, 混匀, 待净化。

依次用3 mL甲醇和3 mL水活化MCX固相萃取柱, 然后取上清液过柱, 弃去滤液, 再依次用3 mL水、3 mL甲醇淋洗, 弃去滤液, 最后用2.5 mL 5%氨水甲醇溶液洗脱, 收集洗脱液, 45 ℃氮吹吹至近干, 用0.1%甲酸水溶液定容至5 mL, 漩涡混匀1 min, 过0.22 μ m有机相滤膜, 供HPLC-MS/MS分析。

1.2.3 色谱条件

色谱柱:Shim-pack GISS C18柱(2.1 mm× 100 mm, 1.9 μ m); 柱温:40 ℃; 流动相A:0.1%甲酸水溶液, 流动相B:甲醇; 流速0.3 mL· min-1; 进样体积10 μ L。

梯度洗脱, B相初始浓度3%, 洗脱程序见表1

表1 梯度洗脱程序

1.2.4 质谱条件

离子源为电喷雾离子源(ESI+), 离子源接口电压4 kV, 雾化气为氮气(3.0 L· min-1), 干燥气为氮气(10 L· min-1), 碰撞气为氩气, 脱溶剂管温度250 ℃, 加热模块温度400 ℃, 接口温度300 ℃, 喷雾针距离1.0 mm, 扫描模式为多反应监测(MRM), 驻留时间100 ms, MRM 参数见表2

表 2 MRM 参数
2 结果与分析
2.1 线性范围

将浓度0.1、0.2、0.5、1.0、2.0、5.0、10.0 μ g· L-1的混合标准工作液进行测定, 内标法定量。以待测物与内标物的浓度比为横坐标, 峰面积为纵坐标, 绘制校准曲线, 线性方程及相关系数见表3

表3 3种β -受体激动剂校准曲线参数
2.2 精密度

配制0.2、0.5、5.0 μ g· L-1浓度β -受体激动剂标准溶液, 平行测定6次, 3种化合物的保留时间和峰面积的相对标准偏差分别在0.018 0%~0.089 7%和0.67%~3.41%, 结果表明仪器精密度良好(表4)。

表4 重复测定的精密度
2.3 灵敏度

配制0.1μ g· L-1β -受体激动剂的标准溶液进样, 根据S/N=3和10计算检出限和定量限(表5)。

表5 0.1μ g· L-1 β -受体激动剂的灵敏度实验
2.4 回收率

取猪肝样品, 添加3个浓度做回收实验, 平行4次, 结果显示见表6

表6 加标回收实验结果
3 小结

本研究建立了一种使用岛津超高效液相色谱仪(LC-30A)和三重四级杆串联质谱仪(LCMS-8050)联用测定猪肝中3种β -受体激动剂的方法。考察了甲醇和乙腈作为流动相, 甲醇分离度和灵敏度都高于乙腈; 考察了PCX小柱和MCX小柱的净化效果, MCX小柱能更大程度地去除杂质, 达到更好的净化效果。综上, 通过方法验证, 符合现有标准的要求, 操作简单, 灵敏度高, 效率高, 可用于动物源性食品中β -受体激动剂的日常检测。

The authors have declared that no competing interests exist.

参考文献:
[1] 沈建忠, 江海洋. 畜产品中β-受体激动剂残留及其危害[J]. 中国动物检疫, 2011, 28(6): 27-28. [本文引用:1]
[2] 田颖. “瘦肉精”检测及在畜产品安全监督中的应用[J]. 现代畜牧兽医, 2011(10): 41-44. [本文引用:1]
[3] 赵芳, 李研东, 李肖莉, . 新型“瘦肉精”和传统“瘦肉精”饲料的区别[J]. 今日畜牧兽医, 2017(7): 3-4. [本文引用:1]
[4] 王瑞深. 浅谈“瘦肉精”的ELISA检测[J]. 畜牧兽医科技信息, 2012(6): 112-114. [本文引用:1]
[5] 余红梅, 石慧花. “瘦肉精”ELISA检测过程中常见问题的分析[J]. 上海畜牧兽医通讯, 2012(3): 84. [本文引用:1]
[6] 王建平, 沈建忠. 猪肝和猪尿中沙丁胺醇和克伦特罗残留的酶联免疫吸附检测法研究[J]. 畜牧兽医学报, 2005, 36(4): 397-401. [本文引用:1]
[7] 岳韩笑, 雷雯, 杜晓宁, . 同位素稀释-气相色谱-串联质谱法测定猪肉中残留的4种β-受体激动剂[J]. 质谱学报, 2018, 39(1): 61-68. [本文引用:1]
[8] 姚德祥, 杜作东, 黎小鹏, . 气相色谱-质谱法测定动物肝脏中β-受体激动剂残留[J]. 现代农业科技, 2016(23): 244-245. [本文引用:1]
[9] 吴平谷, 陈慧华, 王强, . 气相色谱-质谱法测定动物组织中残留的10种β2-兴奋剂[J]. 色谱, 2008, 26(1): 39-42. [本文引用:1]
[10] 马俊美, 孙磊, 刘茁, . 在线固相萃取-高效液相色谱-串联质谱法测定猪肉和羊肉中10种β-受体激动剂[J]. 肉类研究, 2018, 32(5): 19-25. [本文引用:1]
[11] 金玉娥, 郭德华, 郑烨, . 液质联用仪测定动物源性食品中11种β2-受体激动剂的研究[J]. 质谱学报, 2007, 28(4): 193-201. [本文引用:1]
[12] 郑百芹, 李爱军, 张建民, . 液相色谱-串联质谱法测定猪肉中3种β-受体激动剂类药物残留[J]. 中国畜牧兽医, 2012, 39(3): 224-227. [本文引用:1]
[13] 白凌, 陈大舟, 白凌, . 液相色谱-质谱法检测肝脏中5种β-受体激动剂[J]. 质谱学报, 2008, 29(1): 10-12. [本文引用:1]